eISSN: 1897-4309
ISSN: 1428-2526
Contemporary Oncology/Współczesna Onkologia
Current issue Archive Manuscripts accepted About the journal Supplements Addendum Special Issues Editorial board Reviewers Abstracting and indexing Subscription Contact Instructions for authors Ethical standards and procedures
Editorial System
Submit your Manuscript
SCImago Journal & Country Rank
2/2004
vol. 8
 
Share:
Share:

New antimicrobials

Krzysztof Mądry

Współcz Onkol (2004) vol. 8; 2 (52–57)
Online publish date: 2004/03/15
Article file
- Nowe antybiotyki.pdf  [0.20 MB]
Get citation
 
 
WPROWADZENIE


W ostatnich latach obserwuje się wzrost częstości zakażeń wewnątrzszpitalnych bakteriami Gram-dodatnimi. Dla przykładu, w Stanach Zjednoczonych gronkowce koagulazoujemne, S. aureus i enterokoki są obecnie trzema najczęstszymi przyczynami bakteriemii wewnątrzszpitalnych. Rosnąca częstość występowania Gram-dodatnich zakażeń stwarza nowe wyzwania terapeutyczne. Przed wieloma laty pojawiły się gronkowce oporne na metycylinę (MRSA – Methycyllin Resistant Staphylococcus Aureus), które charakteryzują się opornością na wszystkie antybiotyki b-laktamowe. W następnych latach pojawiły się enterokoki, a także pneumokoki oporne na antybiotyki b-laktamowe. W 1987 r. w Wielkiej Brytanii zidentyfikowano pierwszy szczep enterokoka opornego na wankomycynę – VRE (Vancomycin Resistant Enterococcus), od tego czasu VRE szybko rozprzestrzenił się w wielu szpitalach Europy i Stanów Zjednoczonych. W 2002 r. wyizolowano również gronkowca złocistego opornego na wankomycynę [1]. W ostatnich latach wprowadzono do lecznictwa dwa nowe leki działające na bakterie Gram-dodatnie: quinopristin-dalfopristin zarejestrowany w Stanach Zjednoczonych w 1999 r. i linezolid zarejestrowany w 2000 r. (w Polsce leki te są również zarejestrowane). W związku z faktem, że coraz poważniejszym problemem klinicznym (ze względu na wzrost częstości zakażeń i narastanie oporności) są enterokoki, najpierw scharakteryzuję krótko tę grupę, potem nieco szerzej omówię właściwości linezolidu oraz quinopristin/dalfopristiny. W dalszej części artykułu krótko przedstawię również inne nowe antybiotyki.


ENTEROKOKI


Rodzaj Enterococcus został wyodrębniony z rodzaju Streptococcus w 1984 r. Był on wówczas uznawany jako względnie nieszkodliwy składnik fizjologicznej flory jelitowej. Jedynie w rzadkich przypadkach powodował poważne zakażenia, np. urosepsę czy zapalenie wsierdzia. Szczególnie często do zakażenia enterokokami dochodzi na oddziałach, gdzie leczeni są pacjenci na choroby rozrostowe szpiku, choć nie są one najczęstszą przyczyną zakażeń wewnątrzszpitalnych (najczęstsze są infekcje gronkowcowe). Enterokoki są bardzo odporne na środki dezynfekcyjne, co stwarza duże trudności w usuwaniu tych drobnoustrojów z narzędzi medycznych i pomieszczeń szpitalnych [2]. Jak się jednak wydaje, wzrost liczby zakażeń enterokokami jest bardziej związany z dużymi zdolnościami drobnoustrojów na ekspozycję na antybiotyki. Niektóre enterokoki cechuje naturalna oporność na antybiotyki b-laktamowe, dotyczy to zwłaszcza Enterococcus faecium, ponadto wykazują one duże zdolności nabywania oporności na wiele antybiotyków, w tym również na glikopeptydy. Zidentyfikowano 5 genów oporności na wankomycynę, z których najczęstszymi są Van A i Van B. Mogą być one przekazywane z jednej bakterii na drugą, również między gatunkami. Stwarza to, niestety, możliwość przeniesienia oporności z VRE na MRSA [3, 4]. Rozwojowi VRE szczególnie sprzyja stosowanie na szeroką skalę antybiotyków o szerokim zakresie działania, niedziałających na enterokoki. Udokumentowano, że zmniejszenie częstości stosowania cefalosporyny III generacji – ceftazidimu, prowadziło do znacznego ograniczenia ryzyka zakażenia VRE [5].


LINEZOLID


Linezolid jest lekiem należącym do grupy oksazolidynonów. Jest to nowa grupa antybiotyków, stosowanych przede wszystkim w zakażeniach bakteriami Gram-dodatnimi. Jedynym lekiem z tej grupy dopuszczonym do obrotu jest linezolid, inne, jak np. eperezolid czy substancje opatrzone tylko kryptonimami znajdują się jeszcze w fazie badań klinicznych. Linezolid hamuje syntezę białka w fazie inicjacji, w przeciwieństwie do innych antybiotyków hamujących syntezę białka na etapie wydłużania łańcucha polipeptydowego. Prawdopodobnie dlatego jak dotąd nie wykazano oporności krzyżowej między linezolidem a innymi antybiotykami. Wykazano, że linezolid hamuje ekspresję czynników wirulencji wytwarzanych przez S. aureus (alfa-hemolizyny i koagulazy) oraz Streptococcus pyogenes (streptolizyna o i DNA-aza).
Linezolid działa głównie na bakterie Gram-dodatnie: S. aureus (metycylinowrażliwy, jak i metycylinooporny), S. epidermidis i gronkowce koagulazoujemne. Warto dodać, że szczepy MRSA średnio oporne na wankomycynę (VISA – termed Vancomycin-Intermediate S. Aureus) w tym również oporne na tejkoplaninę GISA (Glycopeptide – Intermediate S. Aureus) są jednak wrażliwe na linezolid [6]. Leach i wsp. przeprowadzili badanie porównujące skuteczność stosowania wankomycyny i linezolidu u pacjentów z zakażeniem S. species opornych na metycylinę. Efekty leczenia w obydwu badanych grupach były porównywalne. Poprawę kliniczną w I grupie (osoby otrzymujące wankomycynę) uzyskało 87 proc. osób, a w II grupie (osoby otrzymujące linezolid) u 94,2 proc. pacjentów. Po 7 dniach hospitalizacji zostało wypisanych do domu 30 proc. pacjentów otrzymujących linezolid i 20 proc. pacjentów otrzymujących wankomycynę. Jednak liczba osób wypisanych po 14, 21 i 28 dniach w obydwu badanych grupach była taka sama [7]. W innym badaniu porównywano skuteczność leczenia linezolidem z leczeniem wankomycyną u chorych na wewnątrzszpitalne zapalenie płuc spowodowane MRSA. Zarówno wyniki całkowitego przeżycia – 80 proc., jak odsetek wyleczeń – 59 proc. były lepsze w grupie osób otrzymujących linezolid niż w grupie pacjentów otrzymujących wankomycynę, w której wynosiły odpowiednio 63,5 proc. oraz 35,5 proc. (były to różnice istotne statystycznie) [8].
Linezolid działa na enterokoki: E. faecium, E. faecalis, E. avium, E. raffinosus, E. gallinarium, E. casseliflavus, w tym oporne na wankomycynę – niezależnie od obecności genów VanA i VanB (dotyczy to głównie E. faecium) i oporne na quinopristin/dalfopristin (dotyczy to głównie E. faecalis). Odsetek wyleczeń u osób z zakażeniem enterokokami (faecium lub faecalis) opornych na wankomycynę wynosi 75–87 proc. [9].
Linezolid jest skuteczny w zakażeniach wywołanych przez paciorkowce: S. pneumoniae, S. agalactiae, S. pyogenes oraz paciorkowce b-hemolizujące (w równym stopniu na penicylinooporne, jak i na penicylinowrażliwe). Skuteczność leczenia zapalenia płuc wywołanego S. pneumoniae była wysoka i porównywalna do wyników leczenia cefalosporynami III generacji w skojarzeniu z chinolonami. W badaniu Cammarata i wsp. wśród 53 pacjentów chorych na szpitalne zapalenie płuc, u których stwierdzono bakteriemię S. pneumoniae linezolid był skuteczniejszy (93,3 proc. poprawy klinicznej) niż cefalosporyny (69,2 proc. poprawy klinicznej), była to różnica istotna statystycznie [10].
Wśród innych bakterii Gram-dodatnich wrażliwych na linezolid należy wymienić: Bacillus sp., Corynebacterium sp., Listeria monocytogenes, Mycobacterium tuberculosis i Rhodoccus sp. Linezolid działa również na bakterie beztlenowe, takie jak: Clostridium perfringens, Clostridium difficile, Peptostreptococcus sp., Bacteroides fragilis i Fusobacterium nucleatum. Niewiele bakterii Gram-ujemnych jest wrażliwych na linezolid, a jeśli nawet są, to w umiarkowanym stopniu, dotyczy to: H. influenzae, Moraxella catarrhalis. Całkowicie oporne są Enterobacteriaceae. Linezolid wykazuje umiarkowaną skuteczność wobec Legionelli, Chlamydii i Mykoplazm.

Linezolid można stosować dożylnie lub doustnie. Wchłania się niemal w 100 proc. z przewodu pokarmowego. Maksymalne stężenia w osoczu po podaniu doustnym uzyskuje się już po 1,5 godz., a po podaniu dożylnym po 0,5 godz. [11]. Lek ten wiąże się z białkami w 30 proc., jego objętość dystrybucji wynosi 40–60 l, co może sugerować jego równomierne rozmieszczenie w organizmie. Wykazano, że linezolid dobrze penetruje do tkanki płucnej [12]. Opisywano przypadki eradykacji enterokoków z płynu mózgowo-rdzeniowego u chorych na zapalenie opon mózgowo-rdzeniowych [13]. Linezolid metabolizowany jest w wątrobie do nieaktywnych metabolitów (bez udziału cytochromu P450). Około 30 proc. dawki w postaci niezmienionej wydalanych jest z moczem. Okres półtrwania wynosi ok. 5 godz. Zalecana dawka u osób dorosłych wynosi 600 mg co 12 godz. Wiek nie wpływa w sposób istotny na farmakodynamikę leku. U osób po 70. roku życia dawka nie musi być modyfikowana. U dzieci okres półtrwania jest nieco krótszy i wynosi ok. 3 godz., zalecaną dawkę 10 mg/kg proponuje się podawać co 8–12 godz. Przy zmianie sposobu podawania z dożylnego na doustny nie trzeba modyfikować dawki. Zalecany czas leczenia w przypadku zakażenia VRE wynosi 14–28 dni, u pacjentów z MRSA 7–28 dni, u pacjentów z zapaleniem płuc lub zakażeniem skóry i tkanek miękkich 10–14 dni. Przy stosowaniu niższych dawek, np. 2 razy 200 mg występuje ryzyko rozwinięcia oporności. Wśród 24 badanych ochotników z umiarkowaną niewydolnością nerek (klirens kreatyniny 40–79 ml/min) nie zaobserwowano efektu nefrotoksycznego, podobnie jak nie zaobserwowano efektu hepatotoksycznego u osób z łagodną i umiarkowaną niewydolnością wątroby. U pacjentów przewlekle dializowanych klirens linezolidu wzrasta o 80 proc. w porównaniu z osobami niedializowanymi. Sugeruje się więc podawanie linezolidu bezpośrednio po zakończeniu hemodializy lub podanie dodatkowej dawki 200 mg w momencie zakończenia dializ [14]. Linezolid powinien być podawany we wlewie 30–120 min. Doustnie może być podawany w postaci tabletek lub granulatu. Lek można przyjmować niezależnie od posiłków (jedynym ograniczeniem jest zmniejszenie w diecie zawartości tyraminy, ze względu na działanie adreno- i serotoninergiczne).

Linezolid jest lekiem dość dobrze tolerowanym. Jego najczęstsze działanie niepożądane to: biegunka (ok. 8 proc.), bóle głowy (6,5 proc.), mdłości (6,2 proc.) i wymioty (3,7 proc.). Małopłytkowość, liczba płytek poniżej 75 proc. dolnej granicy normy występuje u 2,4 proc. pacjentów. Do małopłytkowości może dochodzić gdy lek stosowany jest dłużej niż 14 dni. Po odstawieniu leku liczba płytek najczęściej normalizuje się. Biorąc pod uwagę, że po linezolidzie może dojść do niedokrwistości i leukopenii (znacznie rzadziej jednak niż małopłytkowości) bierze się pod uwagę przejściową hipoplazję szpiku. Niektórzy badacze sugerują również immunizacyjny charakter małopłytkowości (w szpiku kostnym stwierdzano obecność prawidłowych magakariocytów oraz wzrost liczby płytek po leczeniu immunoglobulinami) [15]. Warto jednak dodać, że częstość występowania małopłytkowości po linezolidzie jest porównywalna do częstości występowania małopłytkowości indukowanej stosowaniem wankomycyny [16]. Linezolid jest słabym inhibitorem monoaminooksydazy, dlatego może nasilić działanie leków adrenergicznych i serotoninergicznych, np. podawany z aminami sympatykomimetycznymi może prowadzić do wzrostu ciśnienia tętniczego. Jednak jak dotąd nie obserwowano poważniejszych następstw tych interakcji. Opisywano przypadki pobudzenia, gorączki lub tachykardii u osób przyjmujących jednocześnie z linezolidem selektywne inhibitory zwrotnego wchłaniania serotoniny [17].
Oporność na linezolid zdarza się rzadko, ale izolowano już szczepy gronkowców i enterokoków (zwłaszcza E. faecium) opornych na linezolid. W Polsce do 2000 r. (przed wprowadzeniem linezolidu do obrotu) nie zidentyfikowano ani jednego szczepu opornego. Do września 2003 r. zidentyfikowano w Polsce pojedyncze przypadki opornych na omawiany lek enterokoków (zazwyczaj w posiewach kału) – dane nie są jeszcze opracowane. W 2002 r. w Wielkiej Brytanii wyizolowano 3 pierwsze szczepy opornych na linezolid enterokoków (E. faecium i 1 E. faecalis) pierwotnie wrażliwych [18]. Podobne doniesienia pochodzą ze szpitali w Stanach Zjednoczonych [19].

Amerykańska Agencja Żywności i Leków uznała następujące wskazania do stosowania linezolidu: wewnątrzszpitalne zapalenie płuc wywołane przez S. aureus (w tym MRSA) oraz penicylinowrażliwe S. pneumoniae, infekcje VRE oraz zakażenia skóry i tkanek miękkich powodowanych przez gronkowce (w tym MRSA) i paciorkowce.


STREPTOGRAMINY


Antybiotyki z grupy streptograminy zostały odkryte 40 lat temu. Dopiero jednak w ostatnich latach nabrały znaczenia w praktyce klinicznej, głównie za sprawą stworzenia preparatu składającego się z dwóch synergistycznie działających antybiotyków streptograminowych – chinupristyny i dalfopristyny pod nazwą synercid. Lek ten hamuje syntezę białka w fazie wydłużania łańcucha polipeptydowego, a synergizm jego składników polega na tym, że dalfopristyna zmienia konformację bakteryjnego rybosomu, zwiększając jego powinowactwo do chinupristyny [20]. Pomimo iż obydwa przedstawione składniki działają bakteriostatycznie, efekt ich wspólnego działania jest często bakteriobójczy. Lek może być aktywny, nawet jeśli bakteria jest oporna na jeden z jego składników [21].
Synercid jest aktywny przede wszystkim wobec gronkowców: S. aureus (w tym MRSA) oraz gronkowców koagulazoujemnych (w tym metycylinoopornych). Skuteczność synercidu w wewnątrzszpitalnym zapaleniu płuc wywołanym przez gronkowce jest porównywalna do skuteczności wankomycyny. W przypadku gronkowców metycylinowrażliwych odpowiedź kliniczną obserwowano u 66,7 proc. osób po zastosowaniu synercidu i 58,1 proc. po zastosowaniu wankomycyny. Niższy odsetek odpowiedzi klinicznych obserwowano w przypadku infekcji MRSA, wynosił on odpowiednio: 30,9 proc. i 44,4 proc. [22]. Synercid działa na paciorkowce: S. pneumoniae, S. pyogenes, S. agalactiae i paciorkowce zieleniejące. E. faecium (w tym VRE) jest wrażliwy wobec streptogramin, w przeciwieństwie do E. faecalis, który wykazuje naturalną oporność. Odsetek wyleczeń (odpowiedź kliniczna i mikrobiologiczna) w przypadku VRE wynosi średnio 65 proc. [23]. W Stanach
Zjednoczonych jako główne wskazania do stosowania chinupristyny/dalfopristyny uznaje się poważne infekcje VRE oraz powikłane zakażenia skóry i tkanek miękkich powodowane przez paciorkowce z grupy A oraz gronkowca złocistego metycylinowrażliwego. Niektórzy autorzy uznają również za wskazanie wewnątrzszpitalne zapalenie płuc.

Synercid podaje się dożylnie w 5 proc. glukozie w dawce 7,5 mg/kg co 8 godz. przez 7–10 dni. Synercid rozkładany jest do kilku metabolitów. Tylko 2 proc. dalfopristyny i 5 proc. chinupristyny ulega wydaleniu z moczem w niezmienionej postaci. Okres półtrwania leku wynosi 0,5–1 godz. Chinupristyna/dalfopristyna powoduje stosunkowo dużo działań niepożądanych. U ok. 18 proc. pacjentów dochodzi z tego powodu do przerwania leczenia. Najczęstszym działaniem niepożądanym jest odczyn w miejscu wstrzyknięcia leku. Częstość reakcji żylnych po jednorazowym wlewie wynosi ok. 50 proc. Bóle mięśni i/lub bóle stawów występują u ok. 7–10 proc. pacjentów, hiperbilirubinemię (5 razy powyżej normy) obserwowano u 5,5 proc. pacjentów. Do innych działań niepożądanych należą nudności, wymioty, jednak nie stanowią one istotnego problemu klinicznego. Opisywano też przypadki hiponatremii i niedokrwistości [24]. Cinupristyna/dalfopristyna jest inhibitorem cytochromu P 450 (3A4), w konsekwencji może on hamować metabolizm wielu leków (np. midazolamu, cyklosporyny).

Oporność gronkowców jest stosunkowo niewielka i dotyczy przede wszystkim gronkowców koagulazoujemnych. W pracy John MA i wsp. przedstawili wyniki lekowrażliwości 658 szczepów gronkowców koagulazoujemnych, oporność na chinupristynę/dalfopristynę wystąpiła u 15 pacjentów – 2,3 proc. przypadków [25]. Zaobserwowano, że jeśli szczepy gronkowców wrażliwe były na linkomycynę pozostawały wrażliwe również na synercid, który działał wówczas bakteriobójczo. W przypadku szczepów o tzw. oporności MLSB (Macrolide-Lincosamide-Streptogramin B resistant) synercid działał bakteriostatycznie [26]. Oporność typu MLSB może być konstytutywna dla danego szczepu lub wyindukowana. Oporność indukowana dotyczy najczęściej paciorkowców i enterokoków. Oporność na E. faecium wynosi 0,2–13,2 proc. Oporność paciorkowców jest bardzo niska i wynosi <1 proc. przypadków [27]. Poznano jak dotychczas kilka mechanizmów oporności na chinupristynę/dalfopristynę, dochodzi m.in. do usuwania antybiotyku z komórki bakteryjnej oraz enzymatycznego rozkładu antybiotyku.


INNE ANTYBIOTYKI

Daptomycyna


Daptomycyna jest przedstawicielem nowej grupy antybiotyków lipopeptydowych. Jest ona aktywna wobec bakterii Gram-dodatnich, w tym opornych na inne stosowane antybiotyki, tj. MRSA, VRE oraz gronkowce złociste oporne na glikopeptydy. Lek działa bakteriobójczo, uszkadzając ścianę komórkową. W Polsce nie jest jeszcze stosowany. We wrześniu 2003 r. w Stanach Zjednoczonych zaaprobowano jako wskazanie ciężkie zakażenia skóry i tkanek miękkich [28]. Jest zbyt wcześnie na ustalenie jego pozycji w leczeniu zakażeń bakteriami Gram-dodatnimi (większość informacji o skuteczności pochodzi z badań in vitro), ale może on być bardzo cennym lekiem, zwłaszcza że pojawia się oporność na linezolid i synercid.

Tigilcycline (GAR-936)

Tigilcycline jest to lek należący do grupy glicycyklin (III generacja tetracyklin). Jest on obecnie w fazie badań klinicznych. Wiadomo, że jest aktywny wobec MRSA, VRE, streptokoków opornych na penicyliny, bakterii Gram-ujemnych oraz bakterii beztlenowych opornych na inne tetracykliny. Jego status w lecznictwie będzie zależał od stopnia narastania oporności [29].

Faropenem

Faropenem to lek doustny, należący do klasy penemów, będących strukturalną hybrydą penicyliny i cefalosporyny. Znajduje się w fazie badań klinicznych. Jest aktywny wobec szerokiego zakresu bakterii Gram-dodatnich, Gram-ujemnych i beztlenowych. Dotychczas przeprowadzono niewiele badań porównujących skuteczność faropenemu w zestawieniu z cefalosporynami i karbapenemami [30].

Cefpirome

Cefpirome to cefalosporyna IV generacji, aktywna zarówno wobec bakterii Gram-dodatnich, jak i Gram-ujemnych. Jest bardziej skuteczny wobec bakterii z rodzaju Entero- bacteriaceae (E. coli, Klebsiella sp., Enterobacter sp., Proteus sp.) i bakterii Gram-dodatnich (gronkowce, enterokoki) niż cefalosporyny III generacji. Wykazuje porównywalną skuteczność wobec Pseudomonas aeruginosa jak ceftazidim [31]. W terapii empirycznej posocznic jego skuteczność porównywalna jest do Tazocinu [32]. Dodatkową zaletą cefpiromu jest dobra penetracja do tkanek miękkich.

Chinolony III i IV generacji

W Polsce dostępny jest jeden chinolon III generacji – lewofloksacyna (jest on aktywną postacią ofloksacyny – chinolonu II generacji). Jest on aktywny wobec bakterii Gram-ujemnych i Gram-dodatnich. Jednak jego aktywność wobec bakterii Gram-dodatnich jest tylko nieznacznie wyższa od ofloksacyny. Do wskazań do stosowania lewofloksacyny zalicza się: zewnątrzszpitalne zapalenia płuc, zaostrzenie przewlekłej obturacyjnej choroby płuc, ostre zapalenia zatok obocznych nosa oraz zakażenia skóry i tkanek miękkich. Porównywano skuteczność lewofloksacyny ze skutecznością kotrymoksazolu lub efektu placebo w terapii empirycznej chorych z neutropenią. Częstość występowania infekcji była statystycznie niższa w grupie chorych otrzymujących lewofloksacynę [33].
Jedynym chinolonem IV generacji zarejestrowanym w Polsce jest moksifloksacyna (Avelox). Jest to lek o najwyższej aktywności przeciwbakteryjnej spośród stosowanych chinolonów. Jest aktywny wobec bakterii Gram-dodatnich, w tym MRSA i E. faecalis, pneumokoków opornych na ciprofloksacynę oraz atypowych drobnoustrojów oddechowych. Zaletą obu przedstawionych chinolonów jest to, że nie są metabolizowane w wątrobie przez enzymy cytochromu P-450. Tak więc nie podwyższają stężenia innych leków, będących substratami tych enzymów, np. leków przeciwdepresyjnych i metyloksantyn. Ze względu na szybko narastającą oporność bakterii na chinolony II generacji zastosowanie chinolonów III i IV generacji musi być bardzo ostrożne.


PODSUMOWANIE


W związku z narastającą opornością na wankomycynę oraz wzrostem częstości infekcji enterokokowych, zarówno streptograminy, jak i oksazolidynony jawią się jako szczególnie cenne grupy leków. Każda z nich ma wady i zalety. Stosunkowo duża liczba działań niepożądanych (zwłaszcza bóle kostno-mięśniowe, wymagające redukcji dawki antybiotyku lub stosowania leków przeciwbólowych), ryzyko indukowania oporności (dotyczy to zwłaszcza enterokoków), niemal całkowita naturalna oporność na E. faecalis to wady synercidu. W związku z tym lek ten nadaje się do stosowania jedynie w wąskiej grupie chorych, którzy nie mogą być leczeni za pomocą innych leków przeciwbakteryjnych (m.in. w przypadkach szczepów VRE lub MRSA opornych na linezolid). Do wad linezolidu zaliczyć można pojawienie się oporności na ten antybiotyk oraz ryzyko wystąpienia wtórnej mielosupresji (choć nie częstsze niż po zastosowaniu wankomycyny). Porównując obydwa przedstawione leki wydaje się, że linezolid ma przewagę nad synercidem: ma większy zakres działania (jest skuteczny również wobec E. faecalis), rzadziej występują działania niepożądane oraz można go podawać doustnie, co oprócz zwiększenia komfortu pacjenta obniża koszty terapii. Inne nowe antybiotyki nie mają jeszcze określonej pozycji w lecznictwie.


PIŚMIENNICTWO

1. Centers for disease Control and Prevention. Staphylococcus aureus resistant to vancomycin – United States, 2002. MMWR Morb Mortal Wkly Rep 2002; 51: 565-7.
2. Emori TG, Gaynes RP. An overiew of nosocomial infections, including the role of the microbiology laboratory. Clin Microbiol Rev 1993; 6: 428-42.
3. Wood AJ. Vancomycin-Resistant Enterococcal Infections. New England J Med 2000; 342: 710-21.
4. Nobel WC, Virani Z, Cree RG. Co-transfer of vancomycin and other resistant genes from Enterococcus Faecalis NCTC 12201 to Staphylococcus aureus. FEMS Microbiol Lett 1992; 72 (2): 195-8.
5. Bradley SJ, Wilson ALT, Allen MC, et al. The control of hyperendemic glycopeptide-resistant Anterococcus spp. On a haematology unit by changing antibiotic usage. J Antimicrob Chemother 1999; 28: 261-6.
6. Rybak MJ, Hershberger E, Moldovan T, et al. In vitro activities of daptomycin, vancomycin, linezolid and quinopristin-dalfopristin against staphylococci and enterococci, including vancomycin- intermediate and- resistant strains. Antimicrob Agents Chemother 2000; 44: 1062-6.
7. Leach TS, Kaja RW, Eckert SM, et al. Linezolid versus vancomycin for the treatment of MRSA infections: results of a randomized phase III trial (abstract). I Invest Med 1998; 46: 276A.
8. Wunderink R, Rello J, Cammarata K, Vcroos-Dobrera R, Kollef M. Linezolid vs Vancomyvin Analysis of two double-blind studies of patients with mehicillin-resistant Staphylococcus aureus nosocomial pneumoniae. CHEST 2003; 124 (5): 1789-97.
9. Pharmacia and Upjohn Company: Linezolid for the treatment of vancomycin-resistant enterococcal infections: a double-blind trial comparing 600 mg linezolid every 12 hours with 200 mg linezolid every 12 hours (Data on file Kalamazoo, MI, 1999).
10. Cammarata SK, Hempsall KA, Timm JA, et al. Linezolid is superior to cephalosporins in treatment ofpatients with bacteremic Streptococcus pneumoniae community-aquired pneumonia (abstract). Am Jresp rt Care Med 2000; 161 Pt 2 suppl. A654.
11. Stalker DJ, Wajszczuk CP, Batts DH. Linezolid safety, tolerance and pharmacokinetics following oral dosing twice daily for 14,5 days (abstract). 37th Interscience Conference on Antimicrobial Agents and Chemotherapy 1997; 28, Toronto 23.
12. Conte Jr JE, Golden JA, Kipps JE, et al. Intrapulmonary pharmacokinetics of linezolid (abstract). 40th Interscience Conference on Antimicrobial Agents and Chemotherapy 2000 Sep; 17-20: Toronto 21.
13. Hachem R, Afif C, Gokaslan Z, Raad I. Successful treatment of vancomycin – resistant Enterococcus meningitis with linezolid. Eur J Clin Microbiol Inf Dis 2001; 20: 432-4.
14. Brier ME, Stalker DJ, Aronoff GR, et al. Pharmacokinetics of linezolid in subjects with varying degrees of renal function and ondialysis (abstract). I Invest Med 1998; 46: 276A.
15. Bernstein WB, et al. Mechanisms for linezolid-induced anemia and thrombocytopenia. Annals of Pharmacotherapy 2003; 37 (4): 517-20.
16. Nasraway S, Shorr A, Kuter D, Grady N, Le V, Cammarata S. Linezoid does not increase the risk of thrombocytopenia in patients with nosocomial pneumonia: comparative analysis of linezolid and vancomycin use. Clin Inf Dis 2003; 23: 1609-16.
17. Wigen CL, Goetz MB. Serotonin syndrome andlinezolid. Clin Infect Dis 2002; 34: 1651-2.
18. Auckland C, Teare L, et al. Linezolid-resistant enterococci: report of the first isolates in the United Kingdom. J of Antimicrob Chem 2002; 50 (5): 743-6.
19. Rahim S, Pillai SK, Gold HS, Venketaraman L, Inglima K, Press RA. Linezolid-resistant, vancomycin-resistant Enterococcus faecium infection in patients without prior exposure to linesolid. Clinical Infectious Disease 2003; 36 (11): E146-8.
20. Cocito C, et al. Inhibition of protein syntyhesis by streptogramins and related antibiotics. I Antimicrob Chemother 1997; 39 (Suppl) 1: 7-13.
21. Eliopoulos G. Qinupristin-dafopristin and linezolid: evience and opinion. Cl Inf Disease 2003; 36: 473-81.
22. Fagon JY, Patrick H, Haas DW, et al. Treatment of Gram-positive nosocomial pneumonia, prospective randomized comparison of quinupristin. dalfopristin versus vancomycin. Am J Resp Crit Care Med 2000; 161: 753-62.
23. Winston DJ, Emmanouillides C, Kroeber A, et al. Quinupristin/dalfopristinthera-therapy for infections due to vancomyccin-resistat Enterococcus faecium. Clin Infect Dis 2000; 30: 790-7.
24. Lounay O, Chemlal K, et al. Severe reversible reticulocytopenic anemia associated with quinupristin/dalfopristin RP59500 therapy. Clin Infect Dis 1997; 25: 156.
25. Iohn MA, Petch C, Hussain Z. In vitro activity of quinupristin/dalfopristin, linezolid, telithromycin and comparator antimicrobial agents against 13 species ofcoagulase-negative staphylococci. J of Antimicrob Chem 2002; 50 (6): 933-8.
26. Fuchs PC, Barry AL, Brown SD. Bacteridical activity of quinupristin/dalfopristin against Staphylococcus aureus: clindamycin susceptibility as a surrogate indicator. Antimicrob Agents Chemother 2000; 44: 2880-2.
27. Jones RN, Ballow CH Biedenbach DJ, et al. Antimicrobial activity of quinupristin/dalfopristin (RP 59500, Synercid) tested against over 28 000 recent clinical isolates from 200 medilal centers in the United States and Canada. Diagn Microbiol INFECT Dis 1998; 31: 437-51.
28. Tedesco KL, Rybak MJ. Daptomycin. Pharmacotherapy 2004; 24 (1): 41-57.
29. Petersen PJ, Jacobus NV, Weiss WJ, Sum PE, Testa RT. In vitro and in vivo antibacterial activities of a novel glycylcline, the 9-t-butylglycylamido derivative of minocycline (GAR-936). Antimicrob Agents Chemother 1999; 43 (4): 738-44.
30. Dalhoff A, Nasu T, Okamoto K. Betallactamase stability of faropenem. Chemotherapy 2003; 49 (5): 229-36.
31. Hafeez S, Izhar M, Ahned A, Zafar A, Naeem M. In-vitro antimicrobial activity of Cefpirome: a new fourth generation cephalosporin against clinicallysignificant bacteria. J Pak Med Assoc 2000; 50 (8): 250-2.
32. Bauduer F, Cousin T, Boulat O, et al. A randomized prospective multicentre trial of cefpirome versus piperacillin-tazobactam in febrile neutropenia. Leuk Lymphoma 2001; 42 (3): 379-86.
33. Escudero G, Martin G, Garrido G, et al. A prospective, controlled, non randomized study of three cohorts to test the effectiveness of two antibiotics levofloxacin and cotrimoxazol on antibacterial prophylaxis in neutropenic patients. Med Clin (Barc) 2003; 120 (9): 321-5.


ADRES DO KORESPONDENCJI

lek. Krzysztof Mądry
Katedra i Klinika Hematologii, Onkologii
i Chorób Wewnętrznych
Akademia Medyczna
SP CSK
ul. Banacha 1a
02-097 Warszawa
Copyright: © 2004 Termedia Sp. z o. o. This is an Open Access article distributed under the terms of the Creative Commons Attribution-NonCommercial-ShareAlike 4.0 International (CC BY-NC-SA 4.0) License (http://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/), allowing third parties to copy and redistribute the material in any medium or format and to remix, transform, and build upon the material, provided the original work is properly cited and states its license.
Quick links
© 2024 Termedia Sp. z o.o.
Developed by Bentus.