eISSN: 2299-0038
ISSN: 1643-8876
Menopause Review/Przegląd Menopauzalny
Current issue Archive Manuscripts accepted About the journal Special Issues Editorial board Abstracting and indexing Subscription Contact Instructions for authors Publication charge Ethical standards and procedures
Editorial System
Submit your Manuscript
SCImago Journal & Country Rank


2/2011
vol. 10
 
Share:
Share:
Review paper

Premature ovarian failure

Joanna Tkaczuk-Włach
,
Małgorzata Sobstyl
,
Grzegorz Jakiel

Przegląd Menopauzalny 2011; 2: 163–168
Online publish date: 2011/04/28
Article file
- 15_POF.pdf  [0.14 MB]
Get citation
 
 

Wstęp



Zespół przedwczesnego wygasania czynności jajników (ZPWCJ) można scharakteryzować najogólniej jako wyczerpanie funkcji jajników przed ukończeniem 40. r.ż. kobiety [1].

Do charakterystycznych cech zaburzenia należą:

• pierwotny lub wtórny brak miesiączki;

• małe stężenie hormonów gonadalnych, tzn. estrogenów i inhibin (hipoestrogenizm);

• zwiększone stężenie gonadotropin [hormonu folikulotropowego (follicle-stimulating hormone – FSH) i hormonu luteinizującego (luteinizing hormone – LH)] w zakresie odpowiadającym okresowi pomenopauzalnemu (hipergonadotropowy brak miesiączki);

• wiek pacjentki nieprzekraczający 40 lat [2–4].

Zespół przedwczesnego wygasania czynności jajników dotyka 1–2% kobiet przed 40. r.ż., a dokładniej jedną na 10 000 kobiet w wieku 20 lat, jedną na

1000 kobiet do 30. r.ż. oraz jedną na 100 kobiet do

40. r.ż. [1, 5].

Około 20–30% kobiet dotkniętych tym schorzeniem będzie w wywiadzie rodzinnym mieć krewne po stronie żeńskiej wykazujące cechy tego zespołu [3, 6].

Występują etniczne różnice w częstości występowania schorzenia – od 1,4% u Afroamerykanek i Hiszpanek, przez 1% u rasy kaukaskiej, do 0,1% u Japonek [6–8]. Związana z zespołem wygasania czynności jajników utrata płodności powodowana jest w większości przypadków brakiem pęcherzyków jajnikowych, w innych sytuacjach – brakiem odpowiedzi na stymulację przez istniejące pęcherzyki [9].

Patofizjologia



Bezpośrednie przyczyny ZPWCJ są słabo poznane, a te zidentyfikowane do tej pory dotyczą niewielkiej liczby przypadków [10]. Uważa się, że jest to schorzenie o podłożu wysoko heterogennym.

Wśród najczęstszych przyczyn tego zespołu wymienia się:

• jatrogenne (chirurgia, chemioterapia, radioterapia);

• autoimmunologiczne (zespół autoimmunologicznego wielogruczołowego uszkodzenia);

• czynniki środowiskowe, w tym infekcje (np. Herpes zoster, cytomegalowirus);

• defekty chromosomu X (zespół Turnera, zespół łamliwego chromosomu X);

• zaburzenia jednogenowe (np. galaktozemia, mutacje receptora FSH i LH);

• idiopatyczne [2].

Od 10 do 28% przypadków pierwotnego braku miesiączki i 4–18% wtórnego braku miesiączki ma związek z przedwczesnym wygasaniem czynności jajników [8, 11]. Wystąpienie tego schorzenia u kobiet przed 20. r.ż. jest często nazywane wczesnym ZPWCJ. Do najczęstszych przyczyn choroby w grupie bardzo młodych kobiet należą: zespół Turnera i dysgenezja gonad. Zespół Turnera jest najczęściej spotykanym zaburzeniem chromosomowym powodującym upośledzenie funkcji gonad i pierwotny brak miesiączki. Oprócz zaburzeń kariotypu charakterystyczne dla niego są zaburzenia fenotypu w postaci: niskiego wzrostu, płetwiastej szyi, koślawości łokci, puklerzowatej klatki piersiowej, licznych znamion barwnikowych na skórze czy gotyckiego podniebienia [8].

Opisywane są również przypadki wczesnego zespołu wygasania czynności jajników u kobiet z prawidłowym kariotypem i wtedy etiologia najczęściej pozostaje nieznana [6, 12].

Zidentyfikowano na chromosomie X dwa główne regiony odpowiedzialne za rozwój jajników i ich funkcję, tzw. POF1 i POF2, oraz inne, np. FMR1, FMR2. Podobne w funkcji regiony odnaleziono również na autosomach. Ich mutacje mogą przyczyniać się do rozwoju przedwczesnego wygasania czynności jajników, co szczególnie widoczne jest w przypadkach z rodzinnym obciążeniem [3, 8, 9].

Galaktozemia jest następstwem braku enzymu galaktozo-1-fosforanourydylotransferazy GALT. Jest chorobą autosomalną recesywną powodującą opóźnienie umysłowe, kataraktę czy zaburzenia funkcji nerek i wątroby. Zespół przedwczesnego wygasania czynności jajników rozwija się u większości pacjentek z galaktozemią pomimo dobrej kontroli diety. Częstość występowania zespołu wśród pacjentek z galaktozemią ocenia się nawet na 70–80% [2]. Dokładny patomechanizm rozwoju ZPWCJ u tych pacjentek nie jest poznany, ale przypuszcza się, że wynika on z toksycznego efektu, jaki wywiera galaktoza i jej metabolity na pęcherzyki jajnikowe w okresie życia płodowego, redukcji początkowej liczby oogonii czy dezaktywacji gonadotropin przez glikozylację ich podjednostek [8, 13].

Udowodniono związek przedwczesnego wygasania czyn­ności jajników z wieloma chorobami o podłożu autoimmunologicznym. Szacuje się, że ok. 20% pacjentek z ZPWCJ cierpi z powodu towarzyszących chorób autoimmunologicznych, z których najczęściej wymienia się choroby tarczycy, cukrzycę oraz choroby nadnerczy [11, 14, 15].

Około 2–10% przypadków przedwczesnego wygasania jajników jest związanych z procesem autoimmunologicznym dotyczącym nadnerczy [16]. Może być to proces jawny klinicznie lub subkliniczny (obecność przeciwciał przeciwnadnerczowych bez objawów niewydolności nadnerczy) i może poprzedzać wystąpienie objawów choroby Addisona o ok. 8–14 lat. Niektórzy autorzy sugerują więc, aby u młodych kobiet z objawami przedwczesnego wygasania jajników oznaczać przeciwciała przeciwnadnerczowe jako screeninig pozwalający przewidywać możliwość rozwoju autoimmunologicznej niewydolności nadnerczy [16].

Niewydolność jajników może być częścią tzw. zespołu autoimmunologicznego wielogruczołowego uszkodzenia (autoimmune polyglandular syndrome – APS). Przedwczesne wygasanie czynności jajników jest częściej związane z typem I i III niż typem II zespołu [17]. Typ I jest rzadkim autosomalnym recesywnym zaburzeniem, dotyczy głównie dzieci w wieku 3–5 lat oraz we wczesnym okresie dojrzewania. Charakteryzuje się niedoczynnością przytarczyc, niewydolnością nadnerczy, przewlekłą grzybicą śluzówkowo-skórną, niedoczynnością tarczycy i wreszcie przedwczesnym wygasaniem czynności jajników, co dotyczy ok. 17–60% przypadków w typie I [11, 15, 18].

Typ II zespołu jest chorobą autosomalną dominującą i obejmuje niewydolność nadnerczy, autoimmunologiczną niedoczynność tarczycy, cukrzycę typu 1 oraz przedwczesne wygasanie czynności jajnika w 3,6–10% przypadków [8]. Typ II dotyka dorosłych w trzeciej i czwartej dekadzie życia [15, 19]. Typ III zespołu rozwija się u dorosłych i charakteryzuje go niewydolność tarczycy oraz inne schorzenia immunologiczne, z wykluczeniem choroby Addisona.

Stwierdzono również związek między przedwczes­nym wygasaniem jajników a miastenią, zespołem Sjö­gre­na, chorobą Leśniowskiego-Crohna, bielactwem, niedokrwistością złośliwą, reumatoidalnym zapaleniem stawów oraz toczniem rumieniowatym układowym [11, 20].

Wśród czynników środowiskowych mogących mieć wpływ na rozwój ZPWCJ wymienia się: palenie papierosów, metale ciężkie, rozpuszczalniki, pestycydy oraz zanieczyszczenia przemysłowe [3].

Fryzjerki, w porównaniu z innymi zawodami, stanowią grupę kobiet szczególnie narażonych na uszkodzenie zdolności reprodukcyjnych w wyniku kontaktu z chemikaliami, co potwierdzono na modelu zwierzęcym [21].

Palenie papierosów ma związek z przedwczesnym występowaniem menopauzy o 1–2 lata [22, 23]. Sugerowany związek między paleniem tytoniu, który zawiera wiele szkodliwych związków, w tym policykliczne węglowodory, a szybszym wyczerpywaniem zasobów jajnika został jednoznacznie potwierdzony [24]. Palenie papierosów oddziałuje na jajniki i ich funkcje wielokierunkowo. Dimetylobenzoantracen – policykliczny aromatyczny węglowodór obecny w dymie nikotynowym – ma zdolność wiązania z receptorem obecnym na komórkach ziarnistych oraz oocytach, co udowodniono na modelu mysim. W następstwie tego aktywowany jest proapoptyczny gen Bax. Dodatkowo policykliczne węglowodory wywierają bezpośredni toksyczny wpływ na komórki macierzyste [25]. Nikotyna ma również zdolność hamowania działania aromatazy, a tym samym obniżania produkcji estradiolu [3].

Wśród infekcji wirusowych wykazano związek między przebytym zapaleniem ślinianek przyusznych, popularnie zwanym świnką, infekcją cytomegalowirusem oraz wirusem opryszczki a przedwczesnym wygasaniem czynności jajników [3, 8, 26]. Ponadto opisywano rozwinięcie ZPWCJ po przebyciu gruźlicy, malarii, ospy wietrznej i czerwonki, ale dokładny patomechanizm pozostaje zagadkowy [3].

Wielokrotne zabiegi chirurgiczne wykonywane z powodu łagodnych zmian jajnikowych są czynnikiem ryzyka rozwoju ZPWCJ. Ryzyko takie, u kobiet operowanych laparoskopowo z powodu obustronnych torbieli endometrialnych, ocenia się na 0,6–6,8% [27]. Histerektomia czy embolizacja tętnic macicznych może uszkadzać dopływ krwi do jajników, doprowadzając w konsekwencji do zaburzeń funkcji jajników. W zasadzie każdy zabieg chirurgiczny w obrębie miednicy mniejszej obarczony jest ryzykiem uszkodzenia jajników ze względu na ewentualne zmiany w unaczynieniu oraz potencjalnym rozwoju zapalenia w ich obszarze.

Radioterapia może być również powodem rozwoju ZPWCJ. Jej efekty zależą od przyjętej dawki, wielkości napromienianej powierzchni ciała oraz wieku pacjentki. Dawka 20 Gy powoduje u większości młodych kobiet, tzn. poniżej 40. r.ż., zablokowanie czynności jajników, natomiast u kobiet starszych już dawka 6 Gy wywołuje podobne skutki [3]. Uważa się, że jajniki w okresie przedpokwitaniowym pozostają w dużej mierze oporne na działanie radioterapii.

Szacuje się, że każdy miesiąc chemioterapii pociąga za sobą stratę obliczaną na ok. 1,5 roku funkcji czy zdolności reprodukcyjnych [28]. Chemioterapia stosowana u młodych dziewcząt w zależności od zastosowanego leku, dawki oraz wieku pacjentki powoduje zmniejszenie liczby oocytów oraz wpływa na ich jakość i funkcję oraz na funkcję komórek ziarnistych. Chemioterapia z udziałem leków alkilujących wydaje się szczególnie obciążona ryzykiem rozwoju ZPWCJ [28].

Obniżenie funkcjonalności jajników w wyniku chemioterapii jest istotnie częstsze u kobiet starszych niż 35-letnie, a ryzyko wzrasta dodatkowo przy użyciu leków alkilujących, taksanów oraz zastosowanej wysokiej dawce kumulacyjnej. Jakkolwiek dziewczęta w wieku przedpokwitaniowym uważa się za dość oporne na gonadotoksyczność cyklofosfamidu, to obserwacje w grupie kobiet 32-letnich i starszych potwierdzają, że dawka już 12 γ cyklofosfamidu będzie powodować u większości pacjentek (90%) ZPWCJ [3].

Objawy i diagnoza



U większości kobiet z przedwczesnym wygasaniem czynności jajników schorzenie manifestuje się zaburzeniami miesiączkowania. Okazuje się, że czas od pojawienia się symptomów do rozpoznania był dość długi i wynosił od 2 do 5 lat [29].

Niedobór estrogenów jest przyczyną występowania u większości pacjentek symptomów podobnych jak u kobiet w okresie okołomenopauzalnym, tzn. objawów wazomotorycznych, uczucia suchości pochwy, dyspareunii, częstego zapalenia pochwy, zaburzeń oddawania moczu [10].

Należy również pamiętać, że pacjentki te są narażone na zwiększone ryzyko wczesnego rozwoju osteoporozy i chorób układu krążenia. Wynika to z krótkiego czasu ekspozycji na estrogeny – co najmniej o 10 lat krótszego niż u zdrowych kobiet w okresie pomenopauzalnym. Szczególnej uwagi wymagają pacjentki, u których symptomy choroby rozwijają się przed osiągnięciem szczytowej masy kostnej [30].

Diagnozowanie jest oparte na wykluczeniu innych przyczyn pierwotnego lub wtórnego braku miesiączki. W pierwszej kolejności będzie to więc wykluczenie ciąży przez pomiar stężenia beta-hCG. Należy przeprowadzić dokładny wywiad w kierunku ewentualnych zabiegów chirurgicznych w obrębie miednicy mniejszej, leczenia onkologicznego, radio- i chemioterapii, przyjmowanych leków – w tym o działaniu antydopaminergicznym. Wy­wiad rodzinny powinien obejmować pytania o występowanie u chorej i w jej rodzinie chorób o podłożu autoimmunologicznym, w tym zaburzeń funkcji tarczycy, cukrzycy czy niewydolności nadnerczy, wreszcie ewentualnego występowania przedwczesnego wygasania jajników i wieku menopauzy u kobiet z najbliższej rodziny.

Należy również wykluczyć: zaburzenia związane z podwzgórzowym brakiem miesiączki spowodowane stresem, anoreksją, intensywnym odchudzaniem czy ćwiczeniami fizycznymi (małe stężenie gonadotropin, szczególnie LH); hiperprolaktynemię organiczną czy czynnościową [małe/prawidłowe stężenie gonadotropin, zwiększone stężenie prolaktyny, nieprawidłowości w MRI (Magnetic Resonance Imaging) przysadki]; zespół policystycznych jajników (prawidłowe stężenie gonadotropin, duże androgenów, nieprawidłowości w obrazie ultrasonograficznym). Wreszcie należy wykluczyć zaburzenia steroidogenezy, np. niedobór 21-hydroksylazy [nieprawidłowy obraz nadnerczy, zwiększone stężenie androgenów i kortykotropiny (adrenocorticoid hormone – ACTH), prawidłowe stężenia gonadotropin] czy zaburzenia endokrynologiczne, tj. nadczynność i niedoczynność tarczycy, zespół Cushinga (prawidłowe stężenie gonadotropin). U pacjentek z pierwotnym brakiem miesiączki należy poszukiwać wad anatomicznych związanych z zespołem Rokitańskiego lub Ashermana (nieprawidłowości w badaniu fizykalnym i ultrasonograficznym, prawidłowe stężenie gonadotropin) czy zaburzeń różnicowania płci, np. zespołu braku wrażliwości na androgeny (nieprawidłowości w badaniu fizykalnym i obrazowym, badanie kariotypu, stężenie androgenów) [2].

Podstawą diagnostyki są badania biochemiczne. Po uprzednim wykluczeniu ciąży, podstawowe oznaczenia obejmują badanie stężenia FSH, LH, prolaktyny oraz estradiolu. Zaleca się, aby badanie stężenia FSH przeprowadzać co najmniej dwukrotnie w odstępstwie miesiąca. Hormon folikulotropowy na poziomie przekraczającym 40 mIU/ml u kobiety przed 40. r.ż. pozwala potwierdzić diagnozę [8].

Innym markerem endokrynologicznym wskazującym na wyczerpywanie się zasobów jajników jest stężenie inhibiny B. Zmiany jej stężenia znacząco wyprzedzają zwiększenie stężenia FSH u kobiet w okresie perimenopauzalnym.

Nowym, uważanym obecnie za najbardziej czuły, markerem starzenia się jajnika jest AMH (anti-Müllerian hormone). Produkowany jest on przez komórki ziarniste w czasie wczesnych faz rozwoju pęcherzyków astralnych. Jego produkcja znacząco spada wraz ze zmniejszeniem się liczby pęcherzyków [31, 32]. Wykazano, że stężenie AMH zmniejsza się znacząco – wyprzedzając zmiany stężeń inhibiny B oraz FSH – mimo obecności regularnych krwawień miesięcznych u młodych miesiączkujących kobiet w okresie przedmenopauzalnym [33]. Dodatkowo stężenie AMH pozwala różnicować ZPWCJ z zespołem policystycznych jajników, gdzie jego stężenia są wyraźnie zwiększone.

Badanie ultrasonograficzne pozwala na zidentyfikowanie i pomiar jajników (jajniki hipoplastyczne rozpoznaje się przy objętości 0,2–0,3 ml). Poszukuje się również obecności pęcherzyków jajnikowych. Uważa się jednak, że ultrasonografia jajników nie jest metodą pozwalającą na jednoznaczne stwierdzenie braku w nich struktur pęcherzykowych. Jako dalsze postępowanie weryfikujące niektórzy z autorów polecają biopsję jajników, zwłaszcza w przypadku jajników hipoplastycznych [3]. Inne badania potwierdzają, że brak pęcherzyków w bioptatach jajników nie jest w żadnej mierze czynnikiem predykcyjnym w prognozowaniu funkcji generatywnych jajników [34, 35].

Badania genetyczne są szczególnie uzasadnione w przypadkach wczesnego ujawnienia się ZPWCJ [3, 8].

W przypadku stwierdzenia w kariotypie obecności chromosomu Y obowiązuje gonadektomia jako profilaktyka onkologiczna [8].

Badanie autoprzeciwciał jest zalecane w przypadkach towarzyszącej ZPWCJ niedoczynności tarczycy i cukrzycy. Określa się m.in. przeciwciała przeciwtarczycowe, przeciwciała przeciw enzymom steroidowym czy gonadotropinom i ich receptorom oraz przeciwjajnikowe. Okazuje się jednak, że obecność i stężenie przeciwciał przeciwjajnikowych nie koreluje z jakością obrazu klinicznego niewydolności jajników oraz nie jest czynnikiem predykcyjnym wystąpienia przedwczesnego wygasania czynności jajników [8, 15].

Leczenie ZPWCJ powinno być wielokierunkowe, tzn. powinno zapobiegać następstwom hipoestrogenizmu, czyli obejmować redukcję objawów wypadowych, ryzyka osteoporozy, chorób układu krążenia i choroby Alzheimera oraz poprawę funkcji seksualnych, co ma znaczenie zwłaszcza u bardzo młodych kobiet. Natomiast w grupie kobiet pragnących mieć dzieci zaleca się jak najwcześniejsze podjęcie próby leczenia niepłodności [3, 36].

Niestety, nie są dostępne badania oceniające ryzyko związane z długoterminowym podawaniem hormonalnej terapii zastępczej (HTZ) u młodych kobiet z ZPWCJ. Dostępne badania dotyczą raczej kobiet w okresie okołomenopauzalnym [37]. Zalecanym czasem HTZ jest wiek osiąganej fizjologicznie menopauzy, tzn. do

ok. 50. r.ż. [38].

W przypadkach braku objawów dojrzewania HTZ rozpoczyna się między 12. a 13. r.ż. Zaczyna się od minimalnych dawek estrogenów przez 6 miesięcy, następnie po wystąpieniu krwawienia dołączany jest progesteron [3, 37].

Pacjentki cierpiące z powodu przedwczesnego wygasania czynności jajników mają w porównaniu ze zdrowymi owulującymi i miesiączkującymi kobietami znacząco mniejsze stężenie wolnego i całkowitego testosteronu, co w perspektywie długoterminowych deficytów może mieć znaczenie kliniczne. Dlatego jeżeli pojawiają się problemy kliniczne wynikające z niedoboru androgenów, np. obniżenie libido czy uczucie przewlekłego zmęczenia, niektórzy autorzy polecają dodatkowo suplementację testosteronu [39].

Ponieważ spontaniczna owulacja i w następstwie ciąża może zdarzyć się u 5–10% pacjentek, tym kobietom, które pragną uniknąć ryzyka zajścia w ciążę, należy polecić pigułkę antykoncepcyjną lub stosowanie środków barierowych [25, 35].

Redukując ryzyko osteoporozy u kobiet niegodzących się suplementację estrogenów, należy rozważyć podawanie bisfosfonianów lub innych preparatów wspomagających metabolizm kostny oraz zalecić regularną kontrolę gęstości kości – przynajmniej raz na 2 lata [10].

Terapia immunosupresyjna za pomocą glikokortykosteroidów może być rozważana u wyselekcjonowanych pacjentek o udowodnionym tle autoimmunologicznym oraz w przypadkach idiopatycznego ZPWCJ [40].

Indukcja owulacji u tych pacjentek jest szczególnie trudna, a wśród stosowanych w tym celu leków wymienia się: cytrynian klomifenu, gonadotropiny, estrogeny, analogi GnRH, kortykosteroidy oraz dehydroepiandrosteron (DHEA). W przypadkach braku efektu zaleca się wykorzystanie donacji komórek jajowych lub embrionów [3].

Postawienie diagnozy przedwczesnego wygasania czynności jajników i przedstawienie jej skutków pacjentce niesie ze sobą duży bagaż psychicznego obciążenia. Szczególnie traumatyzującym czynnikiem jest ona w grupie kobiet pragnących mieć dziecko. Pacjentki czują bezsilność, złość, gniew, smutek i żal. Takie uczucia mogą mieć bardzo negatywne skutki i wpływać na obniżenie poczucia swojej wartości, szczególnie w aspekcie odczuwania kobiecości, jak i percepcji własnego ciała [41]. Dlatego zaproponowanie ewentualnej konsultacji psychologicznej czy psychiatrycznej, w celu oceny ewentualnych zaburzeń depresyjnych, czy skorzystanie z grupy wsparcia, może być istotną pomocą ze strony lekarza prowadzącego.

Piśmiennictwo



1. Coulam CB, Adamson SC, Annegers JF. Incidence of premature ovarian failure. Obstet Gynecol 1986; 67: 604-6.

2. Beck-Peccoz P, Persani L. Premature ovarian failure. Orphanet J Rare Dis 2006; 1: 9.

3. Kokcu A. Premature ovarian failure from current perspective. Gynecol Endocrinol 2010; 26: 555-62.

4. Shelling AN. Premature ovarian failure. Reproduction 2010; 140: 633-41.

5. Conway GS, Kaltsas G, Patel A, et al. Characterization of idiopathic

pre­mature ovarian failure. Fertil Steril 1996; 65: 337-41.

6. Cameron M, Grover S, Moore P, Jayasinghe Y. Non-chromosomal, non-iatrogenic premature ovarian failure in an adolescent population: a case series. J Pediatr Adolesc Gynecol 2008; 21: 3-8.

7. Luborsky JL, Meyer P, Sowers MF, et al. Premature menopause in a multi-­ethnic population study of the menopause transition. Hum Reprod 2003; 18: 199-206.

8. Nippita TA, Baber RJ. Premature ovarian failure: a review. Climacteric 2007; 10: 11-22.

9. Nelson LM. Clinical practice. Primary ovarian insufficiency. N Engl J Med 2009; 360: 606-14.

10. Woad KJ, Watkins WJ, Prendergast D, Shelling AN. The genetic basis of premature ovarian failure. Aust N Z J Obstet Gynaecol 2006; 46: 242-4.

11. Goswami D, Conway GS. Premature ovarian failure. Horm Res 2007;

68: 196-202.

12. Massin N, Czernichow C, Thibaud E, et al. Idiopathic premature ovarian failure in 63 young women. Horm Res 2006; 65: 89-95.

13. Forges T, Monnier-Barbarino P, Leheup B, Jouvet P. Pathophysiology

of impaired ovarian function in galactosaemia. Hum Reprod Update 2006; 12: 573-84.

14. Santoro N. Research on the mechanisms of premature ovarian failure.

J Soc Gynecol Investig 2001; 8 (1 Suppl Proceedings): S10-2.

15. Dragojević-Dikić S, Marisavljević D, Mitrović A, et al. An immunological insight into premature ovarian failure (POF). Autoimmun Rev 2010;

9: 771-4.

16. Bakalov VK, Vanderhoof VH, Bondy CA, Nelson LM. Adrenal antibodies detect asymptomatic auto-immune adrenal insufficiency in young wo­men with spontaneous premature ovarian failure. Hum Reprod 2002; 17: 2096-100.

17. Kauffman RP, Castracane VD. Premature ovarian failure associated with autoimmune polyglandular syndrome: pathophysiological mechanisms and future fertility. J Womens Health (Larchmt) 2003; 12: 513-20.

18. Perheentupa J. APS-I/APECED: the clinical disease and therapy. Endo­crinol Metab Clin North Am 2002; 31: 295-320.

19. Betterle C, Lazzarotto F, Presotto F. Autoimmune polyglandular syndrome Type 2: the tip of an iceberg? Clin Exp Immunol 2004; 137: 225-33.

20. Nelson LM, Covington SN, Rebar RW. An update: spontaneous premature ovarian failure is not an early menopause. Fertil Steril 2005; 83: 1327-32.

21. Gallicchio L, Miller S, Greene T, et al. Premature ovarian failure among hairdressers. Hum Reprod 2009; 24: 2636-41.

22. Di Prospero F, Luzi S, Iacopini Z. Cigarette smoking damages women's reproductive life. Reprod Biomed Online 2004; 8: 246-7.

23. Cramer DW, Harlow BL, Xu H, et al. Cross-sectional and case-controlled analyses of the association between smoking and early menopause. Maturitas 1995; 22: 79-87.

24. Mattison DR, Thorgeirsson SS. Smoking and industrial pollution, and their effects on menopause and ovarian cancer. Lancet 1978; 1: 187-8.

25. Welt CK. Primary ovarian insufficiency: a more accurate term for pre­mature ovarian failure. Clin Endocrinol (Oxf) 2008; 68: 499-509.

26. Cramer DW. Epidemiologic aspects of early menopause and ovarian cancer. Ann N Y Acad Sci 1990; 592: 363-75.

27. Busacca M, Riparini J, Somigliana E, et al. Postsurgical ovarian failure after laparoscopic excision of bilateral endometriomas. Am J Obstet Gynecol 2006; 195: 421-5.

28. Schover LR. Premature ovarian failure and its consequences: vasomotor symptoms, sexuality, and fertility. J Clin Oncol 2008; 26: 753-8.

29. Alzubaidi NH, Chapin HL, Vanderhoof VH, et al. Meeting the needs of young women with secondary amenorrhea and spontaneous premature ovarian failure. Obstet Gynecol 2002; 99: 720-5.

30. Rebar RW. Premature ovarian failure. Obstet Gynecol 2009; 113: 1355-63.

31. Massin N, Méduri G, Bachelot A, et al. Evaluation of different markers of the ovarian reserve in patients presenting with premature ovarian failure. Mol Cell Endocrinol 2008; 282: 95-100.

32. van Beek RD, van den Heuvel-Eibrink MM, Laven JS, et al. Anti-Mulle­rian hormone is a sensitive serum marker for gonadal function in women treated for Hodgkin's lymphoma during childhood. J Clin Endocrinol Metab 2007; 92: 3869-74.

33. de Vet A, Laven JS, de Jong FH, et al. Antimüllerian hormone serum le­vels: a putative marker for ovarian aging. Fertil Steril 2002; 77: 357-62.

34. Massin N, Gougeon A, Meduri G, et al. Significance of ovarian histology in the management of patients presenting a premature ovarian failure. Hum Reprod 2004; 19: 2555-60.

35. Bidet M, Bachelot A, Touraine P. Premature ovarian failure: predictability of intermittent ovarian function and response to ovulation induction agents. Curr Opin Obstet Gynecol 2008; 20: 416-20.

36. Kalu E, Panay N. Spontaneous premature ovarian failure: management challenges. Gynecol Endocrinol 2008; 24: 273-9.

37. Rebar RW. Premature ovarian "failure" in the adolescent. Ann N Y Acad Sci 2008; 1135: 138-45.

38. Christin-Maitre S. The role of hormone replacement therapy in the management of premature ovarian failure. Nat Clin Pract Endocrinol Metab 2008; 4: 60-1.

39. Kalantaridou SN, Calis KA, Vanderhoof VH, et al. Testosterone deficiency in young women with 46,XX spontaneous premature ovarian failure. Fertil Steril 2006; 86: 1475-82.

40. Barbarino-Monnier P, Gobert B, Guillet-May F, et al. Ovarian auto­immunity and corticotherapy in an in-vitro fertilization attempt. Hum Reprod 1995; 10: 2006-7.

41. Groff AA, Covington SN, Halverson LR, et al. Assessing the emotional needs of women with spontaneous premature ovarian failure. Fertil Steril 2005; 83: 1734-41.
Copyright: © 2011 Termedia Sp. z o. o. This is an Open Access article distributed under the terms of the Creative Commons Attribution-NonCommercial-ShareAlike 4.0 International (CC BY-NC-SA 4.0) License (http://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/), allowing third parties to copy and redistribute the material in any medium or format and to remix, transform, and build upon the material, provided the original work is properly cited and states its license.
Quick links
© 2024 Termedia Sp. z o.o.
Developed by Bentus.